13.6. При попадании в желудок хлорактивных препаратов промывают желудок 2 % раствором гипосульфита и дают внутрь 5 - 15 капель нашатырного спирта с водой, молоко, питьевую соду, магнезиальную взвесь (1 - 2 столовых ложки на стакан воды).
При отравлении формальдегидом проводят обычно промывание желудка с добавлением в воду нашатырного спирта или 3 % раствором карбоната или ацетата натрия (аммония). После промывания дают сырые яйца, белковую воду, молоко.
Приложение 1
Режимы стерилизации отдельных объектов
а) паровой метод
__________________
* Режим 1,1 (120 град. C) при времени стерилизационной выдержки 45 минут рекомендован, помимо вышеназванных объектов, для изделий из резины.
б) воздушный метод стерилизации
в) химический метод стерилизации (растворы химических препаратов)
_______________
*) Раствор перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления при условии хранения его в закрытой емкости.
**) Раствор Дезоксона-1 может быть использован в течение суток.
Химический метод стерилизации (газовый)
Изделия, простерилизованные газовым методом, применяют после их выдержки в вентилируемом помещении в течение:
1 суток - для изделий из металла и стекла,
5 суток - для изделий из резины и полимерных материалов,
14 суток - для изделий, имеющих длительный (свыше 30 мин.) контакт с раневой поверхностью,
21 сутки - для изделий, используемых для детей.
Приложение 2
Этапы предстерилизационной очистки медицинских изделий
_________________
* Температура раствора в процессе мойки не поддерживается
Приложение 3
Приготовление моющих растворов
Приложение 4
Режимы дезинфекции различных объектов в хирургических отделениях
___________________
Примечание: В качестве моющих средств к растворам хлорамина и перекиси водорода добавляют "Астру", "Лотос", "Новость", к растворам Дезоксона-1 - "Лотос".
Приложение 5
Аппараты для снижения микробной обсемененности воздуха в помещениях малого объема
Воздухоочистители передвижные рециркуляционные (ВОПР-0,9 и ВОПР-1,5 предназначены для очистки воздуха от пыли и снижения микробной обсемененности в операционных, перевязочных, палатах и т.д.
Воздухоочистители обеспечивают быструю и высокоэффективную очистку воздуха. Запыленность и бактериальная обсемененность в течение первых 15 минут непрерывной работы снижается в 7 - 10 раз.
Работа воздухоочистителей основана на непрерывной циркуляции воздуха через фильтр из ультрафиолетовых волокон. Работают в режиме как полной рециркуляции, так и с забором воздуха из смежных помещений.
Воздухоочистители используют для очистки воздуха во время работы, они не вызывают неприятных ощущений и не оказывают вредного влияния на окружающих. Надежны и просты в эксплуатации и не требуют квалифицированного обслуживания.
| Технические данные | ВОПР-20-9 | ВОПР-1,5 |
| Производительность М з/ч | 900 | 1500 |
| Электропитание от сети 220 В, 50 мг | ||
| Потребление мощности, Вт | Не более 300 | |
| Габаритные размеры, мм | 1150 х 450 х 1470 |
Выпуск производится Борисоглебским приборостроительным заводом (Воронежская область).
Приложение N 2
к приказу Минздрава СССР
от 31 июля 1978 г. N 720
Инструкция
по бактериологическому контролю комплекса санитарно-гигиенических мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях (отделениях хирургического профиля, в палатах и отделениях реанимации и интенсивной терапии)
1. Общие положения
1.1. Инструкция по бактериологическому контролю комплекса санитарно-гигиенических мероприятий и контролю стерильности изделий медицинского назначения предназначена для работников бактериологических лабораторий и дезинфекционных станций системы Министерства здравоохранения, осуществляющих бактериологический контроль.
1.2. Бактериологические лаборатории санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций проводят контроль не реже двух раз в год, бактериологические лаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсемененность различных объектов и воздуха) один раз в месяц, а контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук хирургов и кожи операционного поля (выборочно) - 1 раз в неделю.
1.3. Объектами исследования при проведении бактериологического контроля являются:
- воздушная среда;
- различные объекты внешней среды;
- хирургический инструментарий;
- шприцы, иглы;
- системы переливания крови многократного использования;
- зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и др. изделия из резины и пластикатов;
- хирургический шовный материал, подготовленный к использованию;
- руки хирургов и кожа операционного поля.
2. Методика микробиологических исследований
2.1. Исследование микробной обсемененности воздушной среды.
2.1.1. Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает:
- определение общего содержания микробов в 1 куб. м воздуха;
- определение содержания зол. стафилококка в 1 куб. м воздуха.
2.1.2. Отбор проб воздуха для бактериального исследования проводят в следующих помещениях:
- операционных блоках;
- перевязочных;
- послеоперационных палатах;
- отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий.
2.1.3. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова.
Скорость протягивания воздуха составляет 25 л в минуту. Количество пропущенного воздуха должно составлять 100 литров для определения общего содержания бактерий и 250 литров для определения наличия зол. стафилококка. Исследование воздуха седиментационным методом допускается в исключительных случаях.
2.1.4. Для определения общего содержания бактерий в 1 куб. м воздуха забор проб проводят на 2 % питательном агаре. Посевы инкубируют при температуре 37 град. C в течение 24 часов, затем оставляют на 24 часа при комнатной температуре, подсчитывают количество колоний, выросших, и производят перерасчет на 1 куб. м воздуха. Если на чашках питательного агара выросли колонии плесневых грибов, их подсчитывают и делают пересчет на 1 куб. м воздуха. В протоколе количество плесневых грибов указывают отдельно.
_____________________
Примечание: При переносе аппарата Кротова из одного помещения в другое его поверхность обрабатывают дезинфицирующим раствором. Столик, внутренние стыки и крышку прибора с внутренней и внешней стороны протирают спиртом (70 %).
2.1.5. Для определения наличия зол. стафилококка забор проб проводят на желточно-солевой агар (ЖСА). Чашки помещают в термостат при 37 град. C на 24 часа и выдерживают еще 24 часа при комнатной температуре. Колонии, подозрительные на стафилококк, подлежат обязательной микроскопии и дальнейшей идентификации.
С желточно-солевого агара снимают, в первую очередь, колонии стафилококка, которые образуют радужный венчик вокруг колонии (положительная лецитовителлазная реакция), дальнейшему изучению подвергаются также пигментированные колонии и с отрицательной лецитовителлазной реакцией. Подозрительные колонии пересевают на чашки с кровяным или молочным агаром. Дальнейшее изучение их проводят по схеме.
Схема бактериологического исследования на стафилококк.
1. Первый день.
Посев на элективные среды (желточно-солевой, молочно-солевой или молочно-желточно-солевой агар). Засеянные среды выдерживают в термостате при 37 град. C в течение 2 суток либо одни сутки в термостате и дополнительно 24 часа на свету при комнатной температуре.
3. Второй - третий день.
Просмотр чашек, фиксация в журнале характера и массивности роста. На выше указанных средах стафилококк растет в виде круглых, блестящих, маслянистых, выпуклых, пигментированных колоний. На средах, содержащих желток, зол. стафилококк, выделенный от человека, в 60 - 70 % случаев образует радужный венчик вокруг колонии (положительная лецитовителлазная реакция). Стафилококки животного происхождения дают положительную лецитовителлазную реакцию в 5 - 10 % случаев.
Отвивка на скошенный агар для дальнейшего исследования не менее 2-х колоний, подозрительных на стафилококк. Для исследования отвивают прежде всего колонии, дающие положительную лецитовителлазную реакцию. При отсутствии на чашках таких колоний дальнейшему исследованию подвергаются пигментированные колонии, схожие по морфологии со стафилококком. При одновременном наличии на чашках колоний стафилококка, отличающихся по пигменту, следует отвивать не менее двух колоний различного вида. Пробирки с посевом помещают в термостат при 37 град. C на 18 - 20 часов.
4. Четвертый день.
После суточной инкубации у выделенных штаммов проверяют морфологию, тинкториальные свойства (окраска по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности. Следует отметить, что характер роста культуры на скошенном агаре в ряде случаев дает возможность "предвидеть" принадлежность ее к виду золотистого стафилококка или эпидермального стафилококка. Первые, как правило, дают обильный равномерный сочный рост, вторые - очень скудный и неравномерный рост по ходу посева.
Окраску по Граму проводят общепринятым методом. Под микроскопом окрашенные по Граму стафилококки имеют вид фиолетово-синих кокков, располагающихся гроздьями или небольшими кучками ("кружево").
Плазмокоагулирующую активность проверяемой в реакции коагуляции плазмы (РКП).
С учетом результатов РКП и лецитовителлазной активности в 70 - 75 % случаев, на четвертый день исследования может быть подтверждена принадлежность выделенного штамма к виду зол. стафилококка и выдан соответствующий ответ. На схеме представлены возможные варианты сочетаний результатов определения плазмокоагулирующей и лецитовителлазной активности.
Если культура обладает только плазмокоагулирующей и только лецитивителлазной активностью, то для окончательного ответа требуется определение других признаков патогенности (ферментации маннита в аэробных условиях - АФМ или ДНКазной активности).
В этих случаях ответ выдают в зависимости от результатов, полученных при определении названных признаков.
В случае необходимости на 4-й день исследования может быть поставлена реакция определения ДНКазной активности или анаэробной ферментации маннита.
Определение антибиограммы проводят только после выделения чистой культуры по показаниям (выбор способа лечения и т. д.).
Выделенные культуры золотистого стафилококка подлежат типированию.
5. Пятый день.
Учет результатов фаготипирования, определения чувствительности к антибиотикам, ДНКазной активности. Окончательная выдача ответа.
Критерии оценки микробной обсемененности воздуха в хирургических клиниках
| Место забора | Условия работы | Общее кол-во колоний в 1 куб. м воздуха | Количество патогенного стафилококка в 250 литрах |
| Операционные | До начала работы | не выше 500 | не должно быть |
| Во время работы | не выше 1000 | не должно быть |
2.2. Исследования микробной обсемененности объектов внешней среды.
2.2.1. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек и аэроманад (строго по показаниям). Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов.
2.2.2. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками размером 5 х 5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0 мл стерильного физиологического раствора. При использовании салфеток стерильный физиологический раствор разливают в стерильные пробирки по 20 мл. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют физиологическим раствором из пробирки, после протирания исследуемого объекта помещают в ту же пробирку.
2.2.3. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100 - 200 кв.см.
2.4. Для выделения стафилококков делают посев непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром (см. схему исследования на стафилококк). Кроме того, в качестве среды накопления используют бульон с 6,5 % хлористого натрия, бульон с 1 % глюкозы, разлитые в пробирки по 0,5 мл, в которые засевают по 0,2 - 0,3 мл смывной жидкости. Засеянные пробирки инкубируют при 37 град. C в течение 20 - 24 часов, после чего делают высев на ЖСА (см. схему исследования на стафилококк).
2.2.5. Для выявления бактерий группы кишечных палочек производят посев на среду обогащения, для чего тампон (марлевую салфетку погружают в 10 - 20 % желчный бульон или среду Кесслера. Через сутки инкубирования при 37 град. C делают пересев на среду Эндо. Подозрительные колонии на среде Эндо микроскопируют и пересевают на 2-ю бродильную пробу - среду Гисса с глюкозой. Среду выдерживают 24 часа при 43 град. C.
______________________
Примечание: При использовании свиной желчи для приготовления желчного бульона концентрация желчи должна быть в 20 раз меньше.
2.2.6. Для выявления синегнойной палочки специальные посевы можно не производить. Обычно колонии синегнойной палочки удается выявить на кровяном агаре или на среде Эндо. Колонии, подозрительные на синегнойную палочку, пересевают на скошенный агар, содержащий 2 - 5 % глицерина или маннита. Колонии синегнойной палочки дают на поверхности скошенного агара обильный рост с зеленоватым оттенком, маслянистой консистенции с характерным медовым запахом. Выделенную культуру окрашивают по Граму, микроскопируют, определяют гемолитические свойства путем высева на чашку с кровяным агаром. Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическому контролю:
А. Наркозная комната
1. Инкубационная трубка
2. Маска наркозного аппарата
3. Тройник наркозного аппарата
4. Гофрированная трубка
5. Ларингоскоп
6. Роторасширитель
7. Дыхательный мешок
8. Руки врачей-анестезиологов-реаниматологов,
сестер-анестезиологов
Б. Предоперационная
1. Тазы для мытья рук хирургов
2. Чистые щетки для мытья рук
3. Фартуки (клеенчатые или полиэтиленовые)
В. Операционная
1. Рабочий стол анестезиологов
2. Операционный стол
3. Шланг вакуум-насоса
4. Шланг кислородной подводки
5. Смывы с рук всех участвующих в операции
6. Кожа операционного поля
Г. Послеоперационные палаты, отделения и палаты
реанимации и интенсивной терапии
1. Кровать, подготовленная для больного
2. Полотенце для рук персонала и смывы с рук
3. Щетка на раковине
4. Шланг кислородной подводки
5. Запасная наркозная аппаратура (набор реанимационной
укладки)
6. Шланг вакуум-отсоса
7. Внутренняя поверхность холодильника (для хранения
лекарств, градусников)
8. Градусники
Д. Перевязочные
1. Кушетка для перевязок
2. Полотенце для рук персонала
3. Щетка на раковине
4. Халат медицинских сестер
5. Руки врачей, медицинских сестер
6. Рабочий медицинский стол
7. Внутренняя поверхность холодильника для хранения лекарств
3. Правила отбора проб для контроля стерильности в лечебно-профилактических учреждениях
3.1. Забор проб на стерильность проводит операционная сестра под руководством сотрудника бактериологической лаборатории в стерильные емкости с соблюдением строжайших правил асептики непосредственно перед проведением операции.
3.2. Для контроля стерильности используют следующие питательные среды:
- сахарный бульон Хоттингера (0,5 и 1 % глюкозы);
- тиогликолевую среду;
- бульон Сабуро.
Одновременный посев изделий на 3 вышеуказанные среды обязателен. При посеве изделия или его части непосредственно в питательную среду количество среды в пробирке (колбе, флаконе и т. д.) должно быть достаточным для полного погружения изделия или его части.
3.3. Посевы в бульон Хоттингера и тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 37 град. C, среду Сабуро - при температуре 20 - 22 град. C.
Посевы инкубируют в термостате в течение 14 суток.
3.4. Описание состава, способа приготовления и правила контроля стерильности питательных сред изложены в приложении 1.
4. Мероприятия, обеспечивающие асептические условия при посевах
4.1. Требования к помещению для посева на стерильность.
4.1.1. Посев исследуемого материала желательно проводить в настольных боксах с ламинарным потоком воздуха. Эти боксы размещают в отдельных помещениях бактериологической лаборатории.
При отсутствии боксов с ламинарным потоком воздуха контроль стерильности проводят в боксированных помещениях (бокс с предбоксником).
Общая площадь бокса должна быть не менее 3 кв.м.