Проведення ветеринарної дезінфекції обєктів тваринництва (інструкція)

11.6.6. Для профилактической дезинфекции ограниченных площадей (боксов, станков и т.п.), а также текущей дезинфекции овчарен, тепляков и лечебно-профилактических пунктов (ЛПП) при паратифе, колибактериозе и пастереллезе овец применяют препарат Глак в аэрозольных упаковках или беспропеллентных баллонах вместимостью 500 мл. Норма расхода Глака в аэрозольных упаковках 50 мл, а в беспропеллентных баллонах - 100 мл/кв.м. Экспозиция 1 ч.

11.6.7. Щелевые полы в помещениях животноводческих комплексов дезинфицируют направленными аэрозолями, используя 10 - процентный раствор формальдегида, раствор гипохлорита натрия с содержанием 5% активного хлора, 10 - процентный раствор препарата надуксусной кислоты.

Расход жидкости для обработки 1 кв.м суммарной поверхности щелевого пола (включая боковые и нижние поверхности решеток пола) должен быть 200 мл. Экспозиция при использовании аэрозолей из раствора формальдегида составляет 3 ч, а из раствора хлорсодержащих препаратов и надуксусной кислоты - 4 ч. Направленные аэрозоли получают посредством насадки ТАН, работающей в режиме, указанном в п. 11.6.1. Щелевой пол направленными аэрозолями обрабатывают двукратно, перемещая насадку поперек щелей пола на расстоянии 0,5-0,7 м. Угол наклона оси насадки должен быть 60 град. к горизонтальной поверхности пола.

11.7. Порядок проведения текущей дезинфекции помещений аэрозолями в присутствии птицы и животных

11.7.1. Для дезинфекции поверхностей помещений и оборудования (в присутствии птицы) в хозяйствах, неблагополучных по колибактериозу, тифу, пуллорозу, микоплазмозу, пастереллезу, инфекционному ларинготрахеиту, применяют низкодисперсные направленные аэрозоли из водных растворов одного из следующих препаратов: гипохлорита натрия, нейтрального гипохлорита кальция или мононатриевой соли дихлоризоциануровой кислоты с содержанием 1,5-2% активного хлора. Кроме того, используют 1,5-2 - процентный раствор хлорамина Б или 3 - процентный стабилизированный раствор перекиси водорода (для его стабилизации добавляют 0,5% молочной или уксусной кислоты), 3 - процентные растворы надуксусной кислоты и алкамона.

11.7.2. Низкодисперсные аэрозоли получают с помощью распылителей, указанных в п. 11.6.1. Поверхности можно обрабатывать также при помощи дезинфекционных установок ЛСД, УДП и других, оборудованных распылителем, обеспечивающим мелкокапельное распыление раствора.

11.7.3. Перед дезинфекцией помещений проводят механическую очистку пола, стен и оборудования от загрязнений. Затем внутренние поверхности помещения, оборудование, инвентарь, а также перьевой покров птицы равномерно обрабатывают (при включенной вентиляции) низкодисперсными (мелкокапельными) аэрозолями одного из препаратов, указанных в п. 11.7.1, из расчета 100-200 мл на 1 кв.м поверхности. После дезинфекции остатки дезинфицирующего раствора из поилок и кормушек удаляют. В период дезинфекции температура в помещении должна быть не ниже 15 град.С.

11.7.4. Для дезинфекции поверхностей помещений и оборудования в присутствии телят в хозяйственных промышленных комплексах, неблагополучных по бронхопневмонии, инфекционному ринотрахеиту, применяют низкодисперсные направленные аэрозоли 3 - процентного раствора надуксусной кислоты и раствора гипохлорита натрия с содержанием 1% активного хлора, расход которых составляет 0,2 л/кв.м.

11.7.5. Низкодисперсные аэрозоли получают с помощью оборудования, указанного в п.п. 11.6.1 и 11.7.2.

11.7.6. Перед дезинфекцией очищают пол, кормушки, автопоилки и стены на высоту 1,5 м.

11.7.7. Аэрозольную дезинфекцию поверхностей помещений в присутствии телят (при заболевании) проводят один раз в три-пять дней.

11.7.8. По окончании распыления кормушки и автопоилки промывают водопроводной водой для удаления остатков дезинфектанта.

11.8. Порядок дезинфекции воздуха животноводческих (птицеводческих) помещений

11.8.1. Воздух птицеводческих помещений дезинфицируют физическими и химическими методами, в животноводческих помещениях - только химическими методами.

Физические методы дезинфекции воздуха осуществляют с помощью источников ультрафиолетового облучения - установок "Кулон" и "Кубок". Химические методы дезинфекции воздуха заключаются в использовании аэрозолей дезинфицирующих веществ.

11.8.1.1. Установку "Кулон" используют в помещениях для выращивания молодняка птицы, содержания родительского и промышленного стада кур, уток, гусей и индеек с целью очистки, дезодорации и дезинфекции воздуха, а также предотвращения загрязнения окружающей среды. Комплект ее состоит из пульта управления и 60-100 шт. унифицированных облучателей, каждый из которых снабжен бактерицидной лампой ДБ-30 или ДБ-60, эритемной ЛЭ-30 и световой лампой ЛБ-30. Для монтажа установки помещение должно иметь высоту не менее 3 м и исправную приточную и вытяжную вентиляции. При напольном содержании птицы облучатели устанавливают в шахматном порядке на высоте 2,3 м от пола, а при клеточном - 1,0-1,1 м от верхнего яруса птицы на расстоянии 5-6 м друг от друга. Поток лучей от бактерицидных ламп ДБ-30 или ДБ-60 направляют в верхнюю зону помещения, от эритемных и световых - в нижнюю.

Расчет потребностей в облучателях показан в таблице 3.

Источники бактерицидного ультрафиолетового излучения работают в помещениях для выращивания молодняка 10-12 ч, а для взрослой птицы - 8-9 ч в сутки.

При возникновении на птицефабрике аэрогенных инфекционных заболеваний (инфекционный ларинготрахеит, грипп, стафилококкоз и др.) бактерицидные лампы работают круглосуточно до полной ликвидации заболевания.

11.8.1.2. Установку "Кубок" используют в вентиляционных каналах помещений для содержания родительского и промышленного стада кур, гусей, индеек и молодняка птиц, инкубаториев, меланжевых цехов и др. Она служит для очистки, дезинфекции и дезодорации воздуха. Установка имеет пульт управления и четыре блока кассет. В каждом блоке находится три кассеты с шестью бактерицидными лампами ДБ-30 или ДБ-60.

Помещения должны быть оборудованы вытяжными и приточными вентиляционными каналами (камерами) с возможностью рециркуляции воздуха и централизованного притока и выброса воздуха. В приточных вентиляционных камерах блоки кассет с бактерицидными лампами устанавливают после калорифера, а в вытяжных - перед вентиляторами выброса воздуха.

В приточных вентиляционных камерах одну бактерицидную лампу ДБ-60 устанавливают для обеззараживания 540 куб.м/ч воздуха, в птицеводческих помещениях - на 1200-1270 куб.м, а в вентиляционных каналах меланжевых цехов - на 240-400 куб.м/ч воздуха.

Очистку, дезинфекцию и дезодорацию вентиляционного воздуха в инкубаториях и птицеводческих помещениях осуществляют круглосуточно, в меланжевых цехах - во время работы их.

11.8.1.3. При работе с установками необходимо соблюдать следующие меры безопасности:

без заземления установки не включать;

ремонт, очистку облучателей и ламп проводить только при снятом напряжении электрического тока;

прямые лучи не должны находиться в поле зрения человека;

при наладке облучателей следует пользоваться защитными очками из простого стекла;

все мероприятия по обслуживанию и ремонту установок должны осуществлять лица, прошедшие инструктаж по технике безопасности.

11.8.2. Для дезинфекции воздуха помещений в присутствии животных и птиц применяют высокодисперсные аэрозоли 40 - процентной молочной кислоты, 20 - процентного раствора резорцина или йодтриэтиленгликоля из расчета 0,1-0,5 мл на 1 куб.м, или аэрозоля хлорскипидара из расчета 2 г хлорной извести и 1 г скипидара на 1 куб.м.

11.8.3. Для дезинфекции воздуха аэрозоли препаратов получают при помощи компрессора и распылителей САГ-1, РССЖ, АРЖ или генераторов ЦАГ и МАГ. Кроме того, препараты выпаривают из емкости (керамической, эмалированной или металлической), не допуская их пригорания. Равномерного распределения дезинфектанта в воздухе помещения достигают с помощью принудительной нагревательной вентиляции или путем распыления (испарения) его в нескольких точках здания. Внутри помещения из одной точки препарат распыляют на объем не более 500 куб.м, а испаряют на объем 100-150 куб.м.

11.8.4. При колибактериозе, тифе, пуллорозе, пастереллезе, микоплазмозе, инфекционном ларинготрахеите птицы воздух помещений аэрозолями молочной кислоты, триэтиленгликоля или резорцина дезинфицируют четыре-пять раз в день с интервалом 1,5-2 ч, а аэрозолями хлорскипидара - один раз при выключенной вентиляции. Экспозиция 20 мин.

11.8.5. Для дезинфекции воздуха помещений в присутствии телят с целью профилактики респираторных болезней используют высокодисперсные (массовый медианный диаметр 5-10 мкм) аэрозоли молочной кислоты или йодтриэтиленгликоля. Молочную кислоту (40 - процентный раствор) расходуют в дозе 100 мг/куб.м при экспозиции 30 мин. Дезинфекцию проводят в дневное время три раза в день с интервалом 4 ч. Йодтриэтиленгликоль разбавляют водой в соотношении 1:1 и 200 мг раствора расходуют на 1 куб.м помещения. Обработку осуществляют один раз в два дня.

Помещения аэрозолями молочной кислоты или йодтриэтиленгликоля обрабатывают в течение всего периода болезни и два-три дня после прекращения выделения больных животных.

11.9. Дезинфекция мясной и яичной тары аэрозолями

11.9.1. На птицефабриках, инкубаторно-птицеводческих станциях, в птицеводческих хозяйствах, птицекомбинатах, а также на тарных складах и тароремонтных заводах яичную и мясную тару перед повторным ее использованием дезинфицируют в герметизированных камерах аэрозолями 37 - процентного раствора формальдегида.

11.9.2. Камеры для дезинфекции тары в хозяйствах, на складах и тароремонтных заводах строят по типовым проектам.

11.9.3. Аэрозоли получают при помощи генератора САГ-1 или безаппаратным способом путем смешивания формалина и хлорной извести, как указано в п. 11.5.1.

11.9.4. Яичные картонные или деревянные коробки с вложенными в них прокладками (вертикально по 12 шт.) укладывают на стеллажи камеры так, чтобы между каждой коробкой оставалось пространство 0,5-1 см, а между прокладками 0,5 см.

После загрузки в камере распыляют 37 - процентный раствор формальдегида из расчета 40 мл на 1 куб.м при экспозиции 8 ч или 60 мл на 1 куб.м при экспозиции 1 ч.

При безаппаратном способе дезинфекции смешивают 50 мл 38 - процентного раствора формальдегида и 50 г хлорной извести на 1 куб.м камеры. Экспозиция 30 мин.

По окончании дезинфекции тары формальдегид нейтрализуют путем распыления в камере 25 - процентного раствора аммиака в количестве 50% объема распыленного формалина при экспозиции 30 мин. или проветривают картонную и деревянную тару на складе в течение одних-двух суток.

11.9.5. Металлические или деревянные ящики из-под мяса перед дезинфекцией очищают от остатков бумаги, промывают струей горячей воды, ставят вертикально на стеллажи камеры так, чтобы между каждым ящиком оставалось пространство не менее 1 см.

После загрузки в камере распыляют 37 - процентный раствор формальдегида из расчета 30 мл на 1 м камеры. Экспозиция 30 мин.

При безаппаратном способе обеззараживания смешивают 30 мл 37 - процентного раствора формальдегида и 30 г хлорной извести на 1 куб.м помещения. Экспозиция 30 мин.

11.10. Дезинфекция инкубаторов и инкубаториев аэрозолями формальдегида

11.10.1. Перед дезинфекцией инкубаторий, подсобные помещения, инкубационные шкафы, инвентарь и все оборудование, а также вентиляционные каналы подвергают тщательной механической очистке.

11.10.2. Инкубационные шкафы и комнатные инкубаторы дезинфицируют аэрозолями формальдегида. Для этого на 1 куб.м внутреннего объема инкубатора берут 45 мл формалина, 30 г марганцово-кислого калия и 20 мл воды. Дезинфекцию парами формальдегида осуществляют при температуре 35-37 град.С и влажности 75-80%. Экспозиция 1 ч.

Для получения паров формальдегида навеску марганцево-кислого калия высыпают в эмалированную или глиняную посуду, которую помещают в емкость, не допуская разбрызгивания жидкости при химической реакции на пол. Затем емкость ставят на середину пола инкубатора, к марганцово-кислому калию приливают отмеренное количество формалина и воды. После дезинфекции пары формальдегида нейтрализуют путем опрыскивания пола инкубатора нашатырным спиртом, взятом в количестве, равном половине объема израсходованного формалина.

11.10.3. Инкубаторий дезинфицируют аэрозолями 37 - процентного раствора формальдегида аналогично аэрозольной дезинфекции производственных птицеводческих помещений.

11.11. Дезинфекция инкубационных яиц аэрозолями

11.11.1. Аэрозольную дезинфекцию инкубационных куриных, индюшиных, утиных и гусиных яиц проводят с профилактической целью дважды: вначале на птицеферме в первые два часа после снесения (независимо от степени их загрязнения), затем в инкубатории (в специальной камере или инкубационных шкафах) перед инкубацией, но только чистого яйца.

Для дезинфекции яиц в хозяйствах оборудуют герметизированные камеры (помещения) объемом не менее 6 куб.м с вытяжными вентиляторами и сетчатыми стеллажами вдоль стен. Яйца размещают в лотках в один ряд на стеллажах вдоль стен.

11.11.2. В инкубаториях для прединкубационной дезинфекции яиц оборудуют стационарные аэрозольные камеры объемом не менее 20 куб.м. Аэрозоли в камерах получают путем химической реакции формалина с хлорной известью, содержащей не менее 25% активного хлора, или марганцово-кислым калием.

При профилактической дезинфекции на 1 куб.м камеры расходуют:

для куриных яиц 30 мл формалина, 20 г марганцово-кислого калия и 15 мл воды или 30 мл формалина и 30 г хлорной извести (при содержании 28-30% активного хлора). При содержании в хлорной извести 20-25% активного хлора ее берут 45 г. Экспозиция 30 мин. при температуре воздуха в камере 25-30 град.С и относительной влажности 90-95%. Кроме того, используют аэрозоли, полученные при смешивании 40 г хлорной извести (21-26% активного хлора), 16 г аммиачной селитры и 12 мл воды. Экспозиция 1 ч при температуре воздуха в камере не ниже 19 град.С и относительной влажности 90-95%;

для утиных яиц 90 мл формалина, 60 г марганцово-кислого калия и 36 мл воды (или 90 мл формалина и 90 г хлорной извести без добавления воды). Экспозиция 30 мин.

Примечание. При дезинфекции яиц в шкафах инкубатора хлорную известь не применяют.

11.11.3. Дезинфекцию яиц в камерах и инкубационных шкафах проводят также с помощью аэрозольной установки САГ-1, насадки ТАН и других распылителей, генерирующих аэрозоль с массовым медианным диаметром частиц 5-20 мкм. При этом для профилактической дезинфекции куриных яиц используют формалин из расчета 30 мл/куб.м, а для утиных - 90 мл/куб.м. Экспозиция 30 мин.

11.11.4. Вместо прединкубационной дезинфекции яйца обеззараживают аэрозолями гекола в дозе 15 мл/куб.м. Первую обработку делают после закладки яиц в инкубационные шкафы, вторую - перед переносом яиц в выводные, третью - в выводном шкафу за 1 ч до выборки цыплят и последнюю - в сортировочном зале (обработка цыплят). Экспозиция во всех случаях 30 мин.

11.11.5. Для аэрозольной дезинфекции куриных яиц в хозяйствах, неблагополучных по псевдочуме птиц, применяют аэрозоли формалина, полученные аппаратным и безаппаратным способами согласно п.п. 11.11.2, 11.11.3. Яйца обрабатывают при экспозиции 1 ч.

11.11.6. По истечении срока дезинфекции пары формальдегида нейтрализуют путем разбрызгивания (распыления) 25 - процентного аммиака в количестве, равном половине использованного формалина. Время нейтрализации 15-20 мин.

11.11.7. Поступившие на инкубацию утиные и гусиные яйца с загрязненной скорлупой моют в инкубатории 5 - процентным раствором дезмола, подогретым до 40-45 град.C. Раствор дезмола готовят перед употреблением, для чего в горячую воду осторожно высыпают навеску препарата и тщательно перемешивают.

Для мойки яиц используют моечную машину М-4. Яйца предварительно помещают на 3 мин. в 5 - процентный раствор дезмола, после чего их пропускают через конвейер машины. В ней они орошаются указанным раствором, очищаются от загрязнения и подсушиваются. Раствор дезмола для смачивания яиц можно использовать три-четыре раза.

Промытые и высушенные яйца сортируют, укладывают в инкубационные лотки и дезинфицируют аэрозолями формалина, как указано в п. 11.11.2.

11.12. Аэрозольная дезинфекция транспорта

11.12.1. Железнодорожные вагоны

11.12.1.1. Железнодорожные вагоны после выгрузки животных, птицы и сырья животного происхождения, а также изотермические вагоны, подлежащие ветеринарно-санитарной обработке, дезинфицируют аэрозолями 37 - процентного раствора формальдегида.

11.12.1.2. Перед проведением дезинфекций аэрозолями вагоны очищают от навоза и других загрязнений и промывают горячей водой.

11.12.1.3. Раствор формальдегида распыляют сжатым воздухом из аэрозольной насадки ТАН. Сжатый воздух можно получать из резервуара централизованной воздушной системы ДПС или от компрессоров различных систем производительностью не менее 30 куб.м воздуха в 1 ч при давлении не менее 4 атм.

11.12.1.4. Вагоны дезинфицируют по второй категории аэрозолями формалина при расходе 20 мл препарата на 1 куб.м и экспозиции 3 ч, вагоны по третьей категории - 35 мл/куб.м и экспозиции 6 ч. При дезинфекции двери и люки закрывают, а для введения аэрозоля оставляют небольшую щель. Температура в вагоне должна быть не ниже 15 град.C. Наружные поверхности вагонов дезинфицируют направленным потоком аэрозоля 8 - процентного раствора формальдегида в количестве 50 мл/кв.м поверхности. Дезинфекцию вагонов со всем инвентарем можно проводить в герметизированном помещении депо. В этом случае двери и люки вагона оставляют открытыми. Помещение депо заполняют аэрозолями (расход раствора формальдегида, экспозиция и температура те же).

По окончании дезинфекции формальдегид нейтрализуют путем введения в вагон (помещение депо) 25 - процентного раствора аммиака в виде аэрозоля (половинная доза по отношению к распыленному раствору формальдегида) и выдерживают 30 мин.

11.12.2. Автомобильный транспорт

11.12.2.1. Автомобильный транспорт дезинфицируют в специальных герметизированных помещениях (дезблок, дезкамера) высокодисперсными аэрозолями 37 - процентного раствора формальдегида или 30 - процентного раствора алкамона. Аэрозоль получают с помощью генераторов АГ-УД-2, ГА-2, САГ-1, АРЖ и других из расчета 30 мл/куб.м. Экспозиция обеззараживания 30 мин. Температура воздуха в помещении (дезблоке, дезкамере) должна быть не ниже 10 град.С.

Автотранспорт можно дезинфицировать и на открытых площадках путем мелкокапельного орошения 5 - процентными растворами формальдегида или алкамона. Расход их составляет 100-150 мл/кв.м, экспозиция 20-30 мин. Мелкокапельное орошение поверхностей транспорта проводят с помощью аэрозольной насадки ТАН, как указано в п.п. 11.6.1. С этой же целью можно использовать дезинфекционные установки ЛСД, ВДМ и другие, оборудованные шнековыми распылителями.

11.12.2.2. Для дезинфекции автомобильного транспорта после перевозки больных туберкулезом животных применяют направленные аэрозоли 1 - процентного (по действующему веществу) раствора надуксусной кислоты из расчета 200 мл/кв.м и 4 - процентный (по действующему веществу) раствор глутарового альдегида в количестве 150 мл/кв.м. Экспозиция 1 ч.

Примечание.

Для профилактической дезинфекции объектов животноводства применяют химические дезинфицирующие средства в концентрации, указанной для возбудителей первой группы устойчивости.

В хозяйствах промышленного типа и комплексах профилактическую дезинфекцию проводят по режимам в соответствии с действующими инструкциями по дезинфекции.

Концентрация растворов формалина, параформальдегида, хлорной извести, нейтрального гипохлорита кальция, глутарового альдегида, лизола, феносмолина, технического раствора фенолятов натрия, ДП-2, препаратов на основе надуксусной кислоты и фрезота указана по действующему веществу, а натра едкого, дезонола, однохлористого йода и кальцинированной соды - по препарату.

Растворы натра едкого, кальцинированной соды и фрезота применяют горячими (80-90 град.C).

Взвесь свежегашеной извести и кальцинированную соду используют только для профилактической и текущей дезинфекции.

При туберкулезе и паратуберкулезе натр едкий или фрезот и формалин или параформ применяют в виде щелочного раствора формальдегида, содержащего 3% щелочи и 3% формальдегида, а при микозах соответственно 1% и 2%.

При аспергиллезе птиц все дезинфицирующие средства, кроме дезонола, используют после увлажнения поверхностей 0,5 - процентным раствором ОП-7 или ОП-10 из расчета 0,3 л/кв.м или их добавляют в дезинфицирующий раствор.

При мыте лошадей хлорную известь и нейтральный гипохлорит кальция применяют в концентрации 4%.

При дерматофитозах и аспергиллезе птицы применяют 4 - процентный глутаровый альдегид.

При дезинфекции автомобильного транспорта после перевозки больных туберкулезом животных используют 3 - процентные глутаровый альдегид и фрезот (без формальдегида). Расход растворов 0,5 л/кв.м. Экспозиция 1 ч.

Для заключительной дезинфекции при туберкулезе препарат ДП-2 применяют в концентрации 5%.

Препарат для дезинфекции не применяют - н/п.

При сибирской язве пушных зверей для дезинфекции шедов и клеток, кроме указанных в таблице препаратов, используют также 7 - процентный (по действующему веществу) раствор перекиси водорода с добавлением 0,2% молочной кислоты и такого же количества моющего средства ОП-7. Обрабатывают двукратно с интервалом 1 ч.

При бешенстве пушных зверей и собак металлические клетки обжигают огнем паяльной лампы с соблюдением мер противопожарной безопасности.

При стрептококкозе нутрий освобожденные от животных помещения дезинфицируют 2 - процентным раствором натра едкого с добавлением к нему 2% метасиликата натрия, 2 - процентным раствором формальдегида или хлорамина, а сетчатые выгула в занятых животными помещениях при стрептококкозе и колибактериозе обрабатывают 2 - процентным раствором хлорамина или дезмола.

При дезинфекции поверхностей помещений для I группы устойчивости возбудителей извести жженой негашеной расходуют 10 г/кв.м, для II группы - 20, для III группы - 40 г/кв.м, а при обеззараживании препаратами ДП-2, хлорной известью, кальцием гипохлорита нейтрального соответственно группам расход активного хлора должен быть 1 г/кв.м, 2 и 3 г/кв.м.

1.1. Настоящие Методические указания определяют порядок и методы контроля качества профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции объектов, подлежащих ветеринарному надзору.

1.2. Методические указания предназначены для специалистов ветеринарных лабораторий, а также лабораторий хозяйств, дезинфекционно-промывочной станций (ДПС) и предприятий по производству и переработке мяса и сырья животного происхождения.

1.3. Контроль качества проводят в три этапа.

1.3.1. Контроль подготовки объектов к дезинфекции (проверяют степень очистки поверхностей, их увлажненность, защиту электрооборудования и приборов, герметизацию помещений) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за ее проведение.

1.3.2. Контроль за соблюдением установленных режимов дезинфекции (выбор препарата и метода дезинфекции, концентрация, температура раствора, равномерность увлажнения поверхностей дезинфицирующим раствором, соблюдение параметров производительности используемых машин и аппаратов, качество распыления раствора) проводит ветеринарный специалист, ответственный за это мероприятие.

1.3.3. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют специалисты ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.

1.3.3.1. Бактериологический контроль качества дезинфекции должен быть неожиданным, без предварительного уведомления работников, ответственных за проведение дезинфекции, и исполнителей этих работ о времени и месте отбора проб для исследования.

1.3.3.2. При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов - бактерий группы кишечной палочки (Escherichia, Citrobacter, Enterobacter), стафиллококков (aureus, epidermatis, Saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.

Качество обеззараживания спецодежды контролируют по выделению тест-микроорганизмов на искусственно контаминированных кусочках тканей, закладываемых в подлежащий обеззараживанию материал.

1.3.3.3. По наличию или отсутствию бактерий группы кишечной палочки определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, колибактериозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипанозомозе, токсоплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссионном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы, а также текущей дезинфекции при болезнях, указанных в п. 1.3.3.4 (кроме туберкулеза, споровых и экзотических инфекций).

1.3.3.4. По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях; заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакозе), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробактериозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме всех видов животных, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангоите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, инфекционном энцефаломиелите, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдомонозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях, вызываемых неклассифицированными вирусами, и дезинфекции вагонов второй категории.

Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют также по выделению соответствующих возбудителей.

1.3.3.5. Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе контролируют по выделению стафиллококков и микобактерий, при сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях, а также вагонов третьей категории - по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.

2.1. Отбирают пробы для бактериологического контроля и доставляют их в лабораторию лица, не несущие ответственности за качество дезинфекции и не находящиеся в подчинении работников, ответственных за ее проведение.

2.2. Отбор проб проводят по истечении срока экспозиции, указанного в соответствующих разделах настоящей Инструкции, до начала проветривания помещений; при дезинфекции спецодежды - по окончании цикла обработки (обеззараживания, стирки, ополаскивания и отжима).

2.3. Пробы (смывы, отпечатки, соскобы) для исследования берут с 10-20 различных участков поверхности животноводческого помещения (полов, стойл, проходов, стен, перегородок, столбов, кормушек, поилок и т.д.). При наличии на объекте участков поверхности с механическими загрязнениями пробы материала для исследования берут методом соскобов.

При контроле качества дезинфекции других объектов ветеринарного надзора пробы берут с 10-20 различных, наименее доступных для дезинфекции участков поверхностей каждого помещения.

2.3.1. Для контроля качества дезинфекции при туберкулезе с каждого вида поверхности берут по пять смывов, которые объединяют в одну пробу. Из каждого помещения отбирают не менее 10 объединенных проб, в том числе по три пробы с пола и кормушек.

При заключительной дезинфекции одновременно берут пробы с территории фермы в разных направлениях от углов здания и от центра каждой стены на расстоянии 5, 10 и 15 м (с учетом рельефа местности). Всего с прилегающей территории отбирают не менее 24 проб. Поверхностный слой грунта разрыхляют стерильным скальпелем или ножом на глубину 3-5 см и отбирают в стерильную посуду 10-20 г исследуемого материала. Если прилегающая территория имеет твердое покрытие, пробы отбирают методом смывов.

2.4. После проведения дезинфекции и последующей экспозиции с участков, подвергаемых контролю, отбирают пробы стерильными ватно-марлевыми тампонами, смоченными в стерильном нейтрализующем растворе или воде.

Участки площадью 10 х 10 см тщательно протирают до полного снятия с поверхности всех имеющихся на ней загрязнений, после чего тампоны помещают в пробирку с нейтрализующей жидкостью.

Плотные загрязнения (корочки) снимают с помощью стерильного скальпеля и переносят в эту же пробирку.

Для нейтрализации хлорсодержащих дезинфицирующих средств служит раствор тиосульфата натрия (гипосульфита), щелочных растворов - раствор уксусной кислоты; формалина - раствор аммиака (нашатырный спирт); кислот, перекиси водорода и ее производных - раствор бикарбоната натрия.

При использовании для дезинфекции щелочного раствора формальдегида участки сначала увлажняют раствором аммиака, затем дополнительно раствором уксусной кислоты.

При дезинфекции дезонолом, лизолом, феносмолином, фенолятами натрия и другими средствами, для которых нет нейтрализаторов, применяют стерильную водопроводную воду.

2.5. Отпечатки на тонкий слой плотной питательной среды берут лица, прошедшие специальную подготовку.

Предметные стекла с нанесенной средой (п. 9 Приложения 3) извлекают корнцангом из ванн или пробирок, не касаясь застывшей питательной среды, и накладывают на исследуемый объект таким образом, чтобы питательная среда соприкасалась с его поверхностью. Через 2 мин. пробы-отпечатки отделяют от контролируемого объекта и помещают в ванны или пробирки, в которых их транспортировали. При взятии проб с труднодоступных или вертикальных поверхностей время контакта слоя питательной среды с объектом сокращают до 30 с.

2.6. Смывы должны быть доставлены в лабораторию в течение 3-6 ч с момента взятия, отпечатка - не позднее 2 ч.

3.1. Метод бактериологического исследования смывов

3.1.1. Пробы, каждую в отдельности, отмывают в той же пробирке путем нескольких погружений и отжатий тампона. Последний удаляют, а жидкость центрифугируют 20-30 мин. при 3000-3500 об./мин. Затем надосадочную жидкость сливают, в пробирку наливают такое же количество стерильной воды, содержимое смешивают и снова центрифугируют. Надосадочную жидкость сливают, а из центрифугата делают посевы.

При наличии в смыве грубых механических примесей их растирают в пробирке стеклянной палочкой, после чего смыв переносят в центрифужную пробирку.

3.1.2. Для индикации кишечной палочки 0,5 мл центрифугата высеивают в пробирки с модифицированной средой Хейфеца или КОДА (п. 11.1 Приложения 3). Посевы выдерживают 12-18 ч в термостате при температуре 37-38 град.C. Изменение сиренево-красного цвета сред (в зеленый или салатовый) с помутнением их и образованием газа свидетельствует о наличии роста кишечной палочки.

Другие изменения цвета (желтоватый, розовый, сероватый), наблюдаемые при росте микроорганизмов других видов, не учитывают.

В сомнительных случаях делают подтверждающий посев с жидких сред на агар Эндо. Посевы инкубируют 12-16 ч при температуре 37-38 град.C.

3.1.3. Для индикации стафилококков 0,5 мл центрифугата высеивают в 5 мл мясопептонного бульона с 6,5% хлористого натрия. Через 22-24 ч инкубирования посевов при температуре 37-38 град.C делают пересевы бактериологической петлей на 8,5 - процентный солевой мясопептонный агар. Посевы выдерживают в термостате 22-24 ч при температуре 37-38 град.C. Из выросших культур для подтверждения роста стафилококков готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют.

3.1.4. Для индикации спорообразующих аэробов смывы обрабатывают, как указано в п. 3.1.1 Приложения 3, но перед центрифугированием их прогревают 30 мин. на водяной бане при 65 град.C, затем центрифугируют. Из центрифугата каждой пробы делают посевы в одну пробирку с мясопептонным бульоном (МПБ) и на две чашки с мясопептонным агаром (МПА). Для контроля качества дезинфекции при сибирской язве МПА может быть заменен дифференциально-диагностической средой (п. 11.3 Приложения 3). Посевы инкубируют 24-28 ч в термостате при 37 град.С.

При наличии роста на МПА подсчитывают колонии и изучают морфологию их при малом увеличении микроскопа. В случае возникновения подозрения на выделение возбудителя сибирской язвы идентификацию такой культуры проводят в порядке, предусмотренном действующими методическими указаниями.

При наличии роста на дифференциально-диагностической среде в крышку чашки Петри вносят 1-2 мл культуры при 20 +/- 2 град.C в течение 1 мин., после чего визуально или под малым увеличением микроскопа проводят учет теста.

Под действием паров аммиака происходит порозовение колоний микроорганизмов, обладающих фосфатазной активностью.

Bac. anthracis фосфатазной активностью не обладают и его колонии остаются бесцветными.

При отсутствии роста или характерных колоний на плотных средах и наличии роста в МПБ делают дробные посевы из МПБ на плотную питательную среду.

3.1.5. При просмотре посевов учитывают общее число проб, в которых обнаружен рост санитарно-показательных микроорганизмов, а при споровой инфекции - и колонии непатогенных спорообразующих аэробов рода Bacillus.

3.2. Метод отпечатков на тонкий слой плотной питательной среды

3.2.1. Метод отпечатков наиболее приемлем в условиях промышленного ведения животноводства на комплексах, птицефабриках и других объектах, где имеются лаборатории.

3.2.2. Ванны и пробирки с пробами-отпечатками, доставленные в лабораторию, помещают на 16-18 ч в термостат при температуре 37 град.C.

3.2.3. После инкубирования пробы просматривают невооруженным глазом на наличие роста.

При отсутствии макроколоний и изменения среды пробы дальнейшим исследованиям не подвергают. В сомнительных случаях, когда отсутствует рост макроколоний, но изменены цвет или прозрачность среды, пробы-отпечатки высушивают на воздухе до полного подсыхания среды, фиксируют над пламенем, окрашивают по Муромцеву и микроскопируют с целью обнаружения микроколоний.

3.2.4. Учитывают общее число отпечатков, в которых обнаружен рост микроорганизмов.

3.3. Исследование с целью выделения микобактерий

3.3.1. Контроль качества заключительной дезинфекции при туберкулезе проводят параллельно двумя методами по выделению стафилококка и микобактерий.

3.3.2. Смывы обрабатывают, как указано в п. 3.1.1. Из центрифугата каждой объединенной пробы делают высев на среды для выделения стафилококков (п. 3.1.3), готовят по шесть мазков на узких (1,2 х 7,5 см) предметных стеклах (п. 10 Приложения 3). Мазки высушивают при комнатной температуре или в термостате 2-3 ч, складывают их по два тыльной стороной и погружают в 8-12 - процентный раствор серной кислоты на 15 мин. После этого стекла-мазки берут пинцетом и погружают на 5-10 с в стерильную дистиллированную воду, а затем переносят в пробирки со средой Сотона и помещают на 12 суток в термостат при 37-38 град.C.

3.3.3. Пробы почвы с прилегающей территории и соскобов с поверхности помещений (каждую в отдельности) помещают в колбу, заливают дву-, трехкратным количеством дистиллированной воды, взбалтывают и фильтруют через двойной слой марли в узкогорлую колбу вместимостью 200-250 мл. К фильтрату добавляют 2-3 мл ксилола или авиационного бензина, встряхивают 15-20 мин. и доливают дистиллированную воду до горлышка. Содержимое отстаивают 30 мин. с целью получения флотата, из которого готовят мазки на узких предметных стеклах (п. 3.3.2).

3.3.4. При наличии роста стафилококков хотя бы в одной исследованной пробе качество дезинфекции признают неудовлетворительным и дальнейшее исследование по выделению микобактерий не проводят.

3.3.5. Стекла с мазками извлекают из пробирок на 6-й, 8-й и 12-й день инкубирования, высушивают, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают по Циль-Нильсену и микроскопируют для обнаружения микроколоний.

3.4. Оценка результатов исследования

3.4.1. Качество профилактической дезинфекции помещений для получения и содержания молодняка скота (птицы) и текущей дезинфекции изолированных секций (боксов, скотных дворов) с автономной системой жизнеобеспечения животных признают удовлетворительным при отсутствии роста санитарно-показательных микроорганизмов в 90% исследованных проб.

При профилактической дезинфекции помещений для содержания взрослого поголовья и текущей дезинфекции частично освобожденных от животных или неизолированных помещений допускается выделение санитарно-показательных микроорганизмов из 20% исследованных проб.

3.4.2. Количество заключительной дезинфекции при ее контроле по выделению бактерий группы кишечной палочки, стафиллококков, грибов и микобактерий признают удовлетворительным при отсутствии выделения названных культур во всех исследованных пробах.

При споровых инфекциях качество дезинфекции признают удовлетворительным при отсутствии роста Bac. anthracis. При прямом посеве на МПА допускают рост единичных (не более трех в смыве) колоний непатогенных спорообразующих аэробов рода Bacillus.

4.1. Метод предназначен для быстрого (непосредственного после окончания экспозиции дезинфекции) контроля качества аэрозольной дезинфекции животноводческих помещений, проводимой формалином.

4.2. Метод основан на окрашивании индикаторной среды под воздействием газовой и капельной фаз аэрозоля формальдегида. В качестве индикатора используют среду Эндо, которая под воздействием формальдегида в процессе аэрозольной дезинфекции приобретает резко очерченное красное окрашивание.

4.3. Перед проведением дезинфекции индикаторные пробирки (п. 12 Приложения 3) размещают на полу, стенах и потолке помещения и на находящемся в нем оборудовании. Особо важно прикрепить индикаторные пробирки с помощью пластилина, липкой ленты или других средств в труднодоступных местах (внутри оборудования, у щелей и т.д.). На одно помещение требуется в среднем 10-16 пробирок.

Перед размещением с пробирок снимают парафиновые колпачки. На полу помещения пробирки устанавливают, а на стенах прикрепляют открытым концом вверх, на потолке фиксируют открытым концом вниз.

4.4. Оценку качества дезинфекции проводят непосредственно после окончания экспозиции (12 или 24 ч). Линейкой с миллиметровой шкалой измеряют длину окрашенного столбика индикаторной среды, начиная с обреза пробирки. Дезинфекцию считают удовлетворительной, если глубина окрашивания среды после экспозиции 12 ч составляет не менее 18 мм, а после экспозиции 24 ч - 30 мм.

5.1. Качество дезинфекции спецодежды, мешкотары и прочих изделий из тканевых материалов, подвергаемых обеззараживанию в камерах методом замачивания в дезинфицирующем растворе, кипячением или по режимам одновременной стирки и дезинфекции, контролируют по выделению тест-культур микроорганизмов из тест-объектов, закладываемых в подлежащий обеззараживанию материал.

5.2. При контроле качества дезинфекции в очагах бактериальных (кроме туберкулеза) и вирусных инфекций в качестве тест-культуры используют музейные штаммы кишечной палочки, в очагах туберкулеза и малоизученных вирусных инфекций - золотистого стафилококка, в очагах споровых инфекций - антракоида.

5.3. В качестве тест-объектов используют кусочки батистовой ткани, импрегнированные соответствующей тест-культурой (п. 7 Приложения 3).

5.4. Тест-объекты (по 2 шт.) закладывают в стерильные мешочки размером 5 х 8 см, изготовленные в виде конверта из той же ткани, что и подлежащие обеззараживанию изделия. Мешочки с вложенными в них тест-объектами помещают в карман спецодежды или пришивают нитками к подлежащим обеззараживанию изделиям.